А   Б  В  Г  Д  Е  Є  Ж  З  І  Ї  Й  К  Л  М  Н  О  П  Р  С  Т  У  Ф  Х  Ц  Ч  Ш  Щ  Ю  Я 


Редуцирующее речовина

Редуцирующие речовини, що мають Rf близьке до Rf олигосахаридов.

Редуцирующие речовини, що мають Rf близьке до Rf оксиметилфурфурола.

Які редуцирующие речовини можуть міститися в витяжці з моркви.

Визначення редукуючих речовин, що утворилися при розщепленні глікогену у-амілазою хімічним методом (наприклад, методом Хагедорна-Єнсена), і визначення утворилася глюкози ензиматичними методом (за допомогою глюкозооксидази) дає майже збігаються результати, так як єдиним редуцирующим продуктом у-амілоліза є глюкоза.

Концентрацію редукуючих речовин в деревних гідроля-затах визначають методом Бертрана або ебуліостатіческім методом[3], Які засновані на реакції окислення редукуючих речовин меднощелочним розчином. Ці методи набули найбільшого поширення, тому що меднощелочной розчин володіє відносно слабкою окисляє здатністю.
 Концентрацію редукуючих речовин в пробі обчислюють у відсотках глюкози. Після видалення редукуючих несахаров, якими є лігносульфонати і продукти розпаду моносахаридів, осадженням їх основним уксусно-кислим свинцем можна ебуліоста-тическим методом визначення кількості редукуючих Сахаров. Зміст моносахаридів знаходять також хроматографіче-ським методом. Для контролю кількості олігосахаридів, присутніх в сульфитном лузі, використовують хроматографії-ний метод або розраховують їх зміст по різниці концентрацій речовин, що редукують до і після інверсії аналізованої проби.

Зміст редукуючих речовин в забарвлених і нефарбованих зразках карамелі майже однакове. Барвник аннатто не робить помітного впливу на орга-нолептические і фізико-хімічні властивості пофарбованої їм карамельної маси.

Найменші втрати редукуючих речовин спостерігаються при рН 3 0 і в цих умовах L-сорбоза.

Загальна кількість редукуючих речовин в сульфітних щелоках зазвичай визначають після осадження лигносульфонатов основним ускуснокіслим свинцем.

Після видалення редукуючих речовин, наприклад сульфіту, при окисленні повітрям з'являється червоне забарвлення.

Під загальними редукуючими речовинами в гідролізної і сульфітно-спиртової промисловості розуміють суміш різних Сахаров і несахарістую речовин, що мають здатність відновлювати фелінгової рідина. До таких речовин відносяться глюкоза, маноза, галактоза, фруктоза, ксилоза, фурфурол, уро-нові кислоти, декстрини (що містяться в розчині, наприклад в сульфитном лузі, і отримані внаслідок неповного гідролізу клітковини або гемицеллюлоз), лігносульфоновиє кислоти, гумінові речовини.

За цей час редуцирующие речовини крові відновлюють пикриновую кислоту в помаранчеве з'єднання. Після закінчення зазначеного терміну пробірки охолоджують під краном.

Виділення оксиметилфурфурола і редукуючих речовин, що мають /1 проводять на п'яти-шести смужках (3x20 см) з поперечним розташуванням волокон під ковпаком, застосовуючи спадний одноразове хроматографирования. Як розчинник застосовують верхній шар суміші етил-ацетат - піридин - вода (5: 1: 5) або інші розчинники (див. С. Як тільки розчинник дійде майже до кінця смуги, хроматографирования вважають закінченим. Хромато-грами знімають, сушать і одну з них виявляють анілінфта-латом.

Метод заснований на реакції редукуючих речовин з анілін-фталати. Після прояви хроматограмм забарвлені продукти реакції елюіруют крижаної оцтової кислотою і розчини колориметрируют на колориметрі ФЕК. Кількість визначається речовини знаходять по калібрувальної кривої, складеної для цієї речовини.

У нейтралізате визначають концентрацію речовин, що редукують і спирту, На бродіння беруть 6 г дріжджів і 300 мл нейтралізата. У колбу для бродіння вливають 250 мл нейтралізата і підігрівають до 30 С. У порцелянову чашку кладуть 6 г дріжджів, доливають 50 мл нейтралізата, ретельно розмішують скляною паличкою і отриману суспензію виливають в колбу з підігрітим нейтралізатом. Колбу закривають ватним корком і ставлять в термостат, температура в якому 32 С регулюється з точністю 1 С. Під час бродіння рідину в колбі зрідка перемішують (не відкриваючи колби), щоб підняти осіли дріжджі. Через 6 год бродіння відбирають пробу 1 в кількості 50 - 80 мл фільтрують і визначають в ній спирт. Ще через 1 год відбирають пробу 2 яку також аналізують на вміст спирту. Якщо концентрація спирту в пробах буде однакова або в пробі 2 нижче, ніж в пробі 1 то бродіння припиняють. Якщо концентрація спирту в пробі 2 вище, ніж в пробі 1 то бродіння продовжують ще 1 ч і відбирають пробу 3 в якій визначають спирт. Пробу, в якій виявлена найбільша концентрація спирту, аналізують на вміст редукуючих речовин. Отримані дані використовують для обчислення спіртообразующей здатності дріжджів.

Залежно від змісту редукуючих речовин якість мальтодекстрин дуже змінюється. При утриманні 15% редукуючих речовин і вище з'являється солодкість і зменшується в'язкість.

При кип'ятінні з розчином редукуючих речовин двовалентне мідь в комплексному поєднанні відновлюється з утворенням закису міді (Сі2О), яка не випадає в осад, а розчиняється, в момент утворення, жовтої кров'яної сіллю і не заважає кип'ятіння рідини. При цьому РВ окислюються до освіти різних продуктів окислення. Моносахариди можуть окислюватися до відповідних органічних кислот або більш глибоко, з розривом ланцюга. Таким чином реакція не йде строго стехіометрично. Результат окислення залежить від температури розчину, тривалості кип'ятіння, концентрації і ступеня лужності розчинів.

В результаті інверсії вміст редукуючих речовин (РВ) в предгідролізате зростає в 1 8 - 2 + 2 рази. Спеціальні дослідження показали, що концентрація власне моносахаридів збільшується при цьому в 3 - 4 рази. Звідси випливає, що предгідролізати містять значну кількість речовин, які, як і моносахариди, мають редуцирующей здатністю, але фактично не є цукрами.

Яке нліяніе надають декстрини н редуцирующие речовини патоки на якість готової продукції.

Екстрактах міститься більше 5% редукуючих речовин від загального змісту сухих речовин, то сушка розпиленням певні складнощі, оскільки частинки злипаються і можлива значна інактивація ферментів.

Перед кількісним хроматографическим аналізом сумішей редукуючих речовин проводять якісний аналіз для встановлення природи речовин, які виділяють з суміші хрому-тографірованіем на папері. Виділеними речовинами можуть бути окремі редуцирующие речовини або групи речовин, що володіють близькими властивостями.

Метод заснований на реакції окислення редукуючих речовин меднощелочним розчином, яку проводять в ебуліостате титруванням (див. с. Особливість методу полягає в тому, що замість кольорового індикатора (метиленовая синя) застосовують значно чутливіший спосіб виявлення кінця титрування, заснований на вимірюванні окислювально-відновного потенціалу платинового електрода, зануреного в реагує рідина. Платиновий електрод в цьому випадку є індикаторним електродом. Для вимірювання його потенціалу складають електричне коло з платинового електрода і хлорсвінцовоамальгамного електрода. Електроди сполучають електролітичним ключем і ланцюг замикають на мілівольтметр. Хлорсвінцовоамальгамний електрод служить електродом порівняння, він має певний постійний потенціал, який дорівнює потенціалу платинового електрода в момент кінця реакції. На початку титрування різниця потенціалів електродів максимальна. У міру додавання цукрового розчину різниця потенціалів зменшується за рахунок збільшення потенціалу платинового електрода. В момент відновлення всієї двухвалентной міді до одновалентной відбувається стрибок окислювально-відновного потенціалу. Значення потенціалу індикаторного електрода стає рівним потенціалу електрода порівняння і продовжує збільшуватися. Стрілка мілівольтметра в ця час швидко минає через нуль.

Метод призначений для визначення окремих редукуючих речовин (цукрів, уронових кислот і ін.) Після їх виділення з суміші хроматографирования на папері.

У фільтраті II визначають зміст редукуючих речовин ебуліостатіческім методом.

Стійкість окремих полісахаридів лігноуглеводного комплексу (деревина сосни до у-випромінювання 60. Таким чином, підвищення виходу редукуючих речовин при обробці облученной деревини водою відбувається за рахунок зниження їх кількості при подальшому гідролізі кислотами. Спосіб визначення концентрації спільні з редукуючих речовин в технологічних розчинах виробництв хімічно рослинної сировини /К.Г. Боголіцин, М.В. Богданов, A.M. Айзенштад]//опубл.

Гідроліз холоцеллюлоз давав більшу кількість редукуючих речовин, ніж їх отримували з вихідної деревини, але приблизно на 1 5% менше, ніж обчислено по надлишкового вуглеводів. Іншими словами буковий лігнін при осахармваніі частково перетворюється в форму, в якій він може гідролізу-тися до редукуючих речовин без гуміфікації або будь-якої іншої вторинної конденсації.

Якими методами визначається масова частка редукуючих речовин в патоці. На який цукор прийнято умовно (розраховувати цей показник. Для виділення олигосахаридов з суміші речовин, що редукують гідролізату проводять хроматографування на п'яти-шести смужках хрому--тографіческіх паперу (3X30 см) з машинним розташуванням волокон так само, як при поділі Сахаров. Розчинником служить суміш з н-бутанолу, піридину і води або суміш ацетону, н-бутанолу та води. Кількість розчинника, узяте для хроматографирования, має бути таким, щоб його вистачило на хроматографирования протягом 50 год при 20 С. Після хроматографування одну смужку проявляють анілінфталатом, як описано на с.

Після ретельного перемішування в розчині визначають редуцирующие речовини (скорочено РВ) за методом Нізовкін і Ємельянової або за методом Бертрана. Вихід РВ обчислюють у відсотках до ваги абсолютно сухого і беззольного аналізованого речовини.

Прямонетітруемая молочна кислота включає ангідриди і редуцирующие речовини. Визначивши вміст редукуючих речовин шляхом титрування розчином молочної кислоти лужного розчину міді, можна обчислити масову частку ангідридів по різниці між масовими частками прямонетітруемой кислоти і редукуючих речовин.

Технічна глюкоза містить близько 70% редукуючих речовин і 10 - 12% води. Вона має жовтий колір, солодка, але з гіркуватим присмаком. Для транспортування вона розливається в бочки або ящики (місткістю до 15 кг, де вона застигає в суцільний шматок. Технічна глюкоза знаходить обмежене застосування. Схема автоматичного сифонного пробоотборника для рідин. Визначення в суслі і бражці змісту редукуючих речовин, кислотності титруемой і активної, змісту іонів SO4 і кальцію проводиться так само, як в нейтралізате, причому для визначення змісту редукуючих речовин в суслі і бражці сульфітно-спиртового виробництва застосовується попереднє гаряче осадження колоїдів розчином основного уксуснокислого свинцю.

Кількісно процес гідролізу оцінюється по виходу редукуючих речовин, що виражається в відсотках від маси абсолютно сухої сировини.

Припинення життєдіяльності мікроорганізмів пов'язане з окисленням редукуючих речовин і підйомом потенціалу, тоді як розрив або розчинення клітин, що приводить до посиленого вступу в середу восстановителей, викликає падіння потенціалу.

В отриманому фільтраті № 2 визначають концентрацію речовин, що редукують ебуліостатіческім методом за варіантом I (див. С. Отриманий результат аналізу є сумарною концентрацією гексоз, пентоз і фурфуролу, яка виражена у відсотках глюкози, так як титр медноще-молочного розчину встановлений по глюкозі. якщо проба містить менше 0 2% редукуючих речовин, то її треба упарити в 2 - 5 разів або нанести на хроматограму відповідно більший обсяг. Для розпарювання 100 мл проби відмірюють циліндром, 25 мл з них наливають в випарювальну чашку і ставлять на киплячу водяну баню. у міру випаровування в чашку додають пробу з циліндра. упаренную пробу кількісно переносять в мірну колбу місткістю 25 або 10 мл і об'єм розчину доводять до мітки, додаючи воду. Для одночасного хроматографирования готують 3 - 5 проб.

Як показують дані таблиці, помітного збільшення редукуючих речовин і зміни в'язкості при двадцятихвилинна кип'ятінні розчину гіалуронової кислоти не відбувається, і, отже, деструкції гіалуронової кислоти в цих умовах, очевидно, не відбувається.

Величина помилки аналізу визначається кількістю і складом речовин, що редукують, які не є глюкозою.

Для переробки кондиційної цукрових буряків з вмістом редукуючих речовин не більше 1% і загального азоту не більше 0 2% рекомендують застосовувати схему очищення, дещо відмінну від вищеописаної.

З метою спрощення методу Офнер для визначення редукуючих речовин запропонував розчин, до складу якого входить CuSO4 сегнетовая сіль і N CCV Таким чином, в цьому розчині концентрація іонів гідро-ксиліт знижена в порівнянні з реактивом Фелінга, і тому розчин добре зберігається. Редукуючимцукру окислюються дещо повільніше, ніж з розчином Фелінга.

З таблиці видно, що найбільш багаті ксилозой редуцирующие речовини, одержувані гідролізом гемицеллюлоз вівсяної лушпиння, кукурудзяної качана і бавовняного лушпиння.

При варінні осиковою, березової і букової деревини редуцирующие речовини сульфітного лугу містять 90 - 95% пентоз і 5 - 10% гексоз.

Вихід сухої речовини досягає 60% від введеного редукує речовини при майже 100% - ном використанні азоту. Застосовуваний мікроорганізм (Candidia arborea) крупніше, ніж ГогШа utilis, але все ж не є мицеллярная грибком. Освіта волокнистих згустків культури полегшує її видатеніе.

Вихід сухої речовини досягає 60% від введеного редукує речовини при майже 100% - ном використанні азоту. Застосовуваний мікроорганізм (Candidia arborea) крупніше, ніж Tortula utilis, але все ж не є мицеллярная грибком. Освіта волокнистих згустків культури полегшує її виділення.

До декстрином відносяться всі речовини, що дають підвищення редукуючих речовин після гідролізу. Однак таку властивість, крім декстринів, що утворюються з крохмалю, можуть володіти речовини іншого походження. При зброджуванні чистого крохмалю зміст декстринів в бражці не перевищує 0 2%, в бражку з зернових культур їх виявляється значно більше, що свідчить про умовність прийнятого методу аналізу. У табл. 25 наведені дані про вміст у зрілих бражку мальтози, декстринів і загальних редукуючих речовин в залежності від виду сировини, що переробляється.