А Б В Г Д Е Є Ж З І Ї Й К Л М Н О П Р С Т У Ф Х Ц Ч Ш Щ Ю Я
Заморожена проба
Заморожена проба потім аналізується для визначення її складу за допомогою найрізноманітніших методів. І якщо великих сумнівів щодо однозначності результатів хімічного аналізу зазвичай немає, існують великі сумніви щодо того, наскільки склад охолодженої проби відповідає складу реагуючої суміші в тому місці де розташовувався пробовідбірник, в його відсутність.
Схема реконструйованого іонного джерела для безпосереднього аналізу замороженої рідини. Цей електрод і протівоелектрод можуть переміщатися в вакуумі як один щодо одного, так і по відношенню до нерухомого електроду-тиглю із замороженою пробою з таким розрахунком, щоб забезпечити рівномірне покриття зразка розпорошеними частинками золота і створити контакт плівки з краями тигля. Процедура напилення плівки має важливе значення для проведення подальшого аналізу рідини.
Додавання в досліджувану рідину порошкоподібного графіту - не кращий вихід з положення, однак він був застосований авторами при аналізі розчинів, щоб забезпечити потрібну провідність заморожених проб. Відомо, що рідини в стані льоду набувають властивості ізоляторів, тому їх безпосередній аналіз методом вакуумної іскри скрутний. З іншого боку, додавання в аналізовану рідину порошкоподібного графіту приводить до ускладнення спектра мас, перекриття багатьох аналітичних ліній домішок, в го же час провідність проби поліпшується нелначі-кові.
Постійний моніторинг проб води на віруси поки не доступний більшості місцевих лабораторій, які контролюють якість вододжерел. Однак існує можливість вірусологічного дослідження заморожених проб води, що містять концентрований вірус, які можуть тривалий час зберігатися при температурі - 20 С.
Стан окислення сірки в цьому з'єднанні невідомо. Достатня кількість двоокису сірки конденсируют в заморожену пробу нітрозілфторіда в металевому реакторі так, щоб при нагріванні продукт суспендованих в рідкого двоокису сірки.
Зазвичай Ліофільні сушку проводять в дві стадії. Спочатку більшу частину води, що знаходиться в формі льоду, сублимируют із замороженої проби в високовакуумної системі при температурі значно нижче Про С. Часто вважають, що вся вільна вода виявляється замороженої при - 30 С. Видалення парів води в високому вакуумі має бути досить ефективним, щоб забезпечити досить низький тиск у всій системі. Для цього використовують три методи: а) конденсацію і повторне заморожування нижче температури проби; б) поглинання води висушують агентами і в) пряму відкачування.
Час напилення плівки 10 - 20 хв. Дослідження структури напиляного шару, про-веденнор за допомогою електронного мікроскопа, показало, що плівка, що утворюється на поверхні замороженої проби, має, по всій ймовірності рівномірну товщину і щільність. Величина часток розпорошеного в искровом розряді золота не перевищує 0 1 - 0 2 мкм. Під час мас-спектрометричного аналізу рідин золота плівка забезпечує підведення енергії до місця розряду, і одночасно з її допомогою здійснюється відведення тепла з поверхні проби, про що свідчить низький тиск парів досліджуваного речовини (10 - 6 - 10 - 7 мм рт. Ст.) в камері іонного джерела при проведенні експерименту. Провідна металева тонка плівка на поверхні аналізованої рідини забезпечує спокійне іскріння, і при наборі експозицій (від 5 - 10 - 5 до 300 м /с) витрачається 1 - 2 мг досліджуваної речовини. Іонні струми, що реєструються монітором, складають близько 3 - 10 - 10 а, що для порівнянних режимів роботи іскрового джерела в 3 - 4 рази більше їх значень, зазвичай спостерігаються при аналізі проводять твердих зразків.
Застосовують і інші методи фіксації біологічного матеріалу, наприклад у формаліні. Іноді тканини перед заморожуванням гомогенизируют. Так, в Канаді банк зразків містить понад 10 тис. Тканин 210 видів птахів, 43 видів ссавців, 50 видів риб, 11 видів рептилій і 6 видів амфібій. В якості ємностей для заморожених проб використовуються фольга або скляний посуд.
Застосовують і інші методи фіксації біологічного матеріалу, наприклад у формаліні. Іноді тканини перед заморожуванням гомогенизируют. Так, в Канаді банк зразків містить понад К) тис. Тканин 210 видів птахів, 43 видів ссавців, 50 видів риб, 11 видів рептилій і 6 видів амфібій. В якості ємностей для заморожених проб використовуються фольга або скляний посуд.
Пробу в пробірці ємність т о мл зі звичайного скла майже повністю занурюють в прозрр чний посудину aMapa, наповнений рідким азотом. Про помоввю Тримають ївши ДРД РЗУ закріплюють в певному положенні на Р Уото ванні г 2 ш від передньої стінки судини. Світло від ртутної лШг1И направляють на світлофільтр УФС-2. Світло лампи з допомогу конденсатора фокусується на замороженої пробі.
Пробу в пробірці ємність 10 мл зі звичайного скла почтя повністю занурюють в прозору судину Д'вара, наповнені рідким азотом. З поіощвю власника пробірку закріплюють в певному становище на відстані 1 - 2 мм від передньої стінки судини. Світло від ртутної лампи спрямовує на світлофільтр УФС-2. Світло лампи за допомогою конденсатора фокусується на замороженої пробі.
Схема реконструйованого іонного джерела для безпосереднього аналізу замороженої рідини. Цей електрод і протівоелектрод можуть переміщатися в вакуумі як один щодо одного, так і по відношенню до нерухомого електроду-тиглю із замороженою пробою з таким розрахунком, щоб забезпечити рівномірне покриття зразка розпорошеними частинками золота і створити контакт плівки з краями тигля. Процедура напилення плівки має важливе значення для проведення подальшого аналізу рідини.
Додавання в досліджувану рідину порошкоподібного графіту - не кращий вихід з положення, однак він був застосований авторами при аналізі розчинів, щоб забезпечити потрібну провідність заморожених проб. Відомо, що рідини в стані льоду набувають властивості ізоляторів, тому їх безпосередній аналіз методом вакуумної іскри скрутний. З іншого боку, додавання в аналізовану рідину порошкоподібного графіту приводить до ускладнення спектра мас, перекриття багатьох аналітичних ліній домішок, в го же час провідність проби поліпшується нелначі-кові.
Постійний моніторинг проб води на віруси поки не доступний більшості місцевих лабораторій, які контролюють якість вододжерел. Однак існує можливість вірусологічного дослідження заморожених проб води, що містять концентрований вірус, які можуть тривалий час зберігатися при температурі - 20 С.
Стан окислення сірки в цьому з'єднанні невідомо. Достатня кількість двоокису сірки конденсируют в заморожену пробу нітрозілфторіда в металевому реакторі так, щоб при нагріванні продукт суспендованих в рідкого двоокису сірки.
Зазвичай Ліофільні сушку проводять в дві стадії. Спочатку більшу частину води, що знаходиться в формі льоду, сублимируют із замороженої проби в високовакуумної системі при температурі значно нижче Про С. Часто вважають, що вся вільна вода виявляється замороженої при - 30 С. Видалення парів води в високому вакуумі має бути досить ефективним, щоб забезпечити досить низький тиск у всій системі. Для цього використовують три методи: а) конденсацію і повторне заморожування нижче температури проби; б) поглинання води висушують агентами і в) пряму відкачування.
Час напилення плівки 10 - 20 хв. Дослідження структури напиляного шару, про-веденнор за допомогою електронного мікроскопа, показало, що плівка, що утворюється на поверхні замороженої проби, має, по всій ймовірності рівномірну товщину і щільність. Величина часток розпорошеного в искровом розряді золота не перевищує 0 1 - 0 2 мкм. Під час мас-спектрометричного аналізу рідин золота плівка забезпечує підведення енергії до місця розряду, і одночасно з її допомогою здійснюється відведення тепла з поверхні проби, про що свідчить низький тиск парів досліджуваного речовини (10 - 6 - 10 - 7 мм рт. Ст.) в камері іонного джерела при проведенні експерименту. Провідна металева тонка плівка на поверхні аналізованої рідини забезпечує спокійне іскріння, і при наборі експозицій (від 5 - 10 - 5 до 300 м /с) витрачається 1 - 2 мг досліджуваної речовини. Іонні струми, що реєструються монітором, складають близько 3 - 10 - 10 а, що для порівнянних режимів роботи іскрового джерела в 3 - 4 рази більше їх значень, зазвичай спостерігаються при аналізі проводять твердих зразків.
Застосовують і інші методи фіксації біологічного матеріалу, наприклад у формаліні. Іноді тканини перед заморожуванням гомогенизируют. Так, в Канаді банк зразків містить понад 10 тис. Тканин 210 видів птахів, 43 видів ссавців, 50 видів риб, 11 видів рептилій і 6 видів амфібій. В якості ємностей для заморожених проб використовуються фольга або скляний посуд.
Застосовують і інші методи фіксації біологічного матеріалу, наприклад у формаліні. Іноді тканини перед заморожуванням гомогенизируют. Так, в Канаді банк зразків містить понад К) тис. Тканин 210 видів птахів, 43 видів ссавців, 50 видів риб, 11 видів рептилій і 6 видів амфібій. В якості ємностей для заморожених проб використовуються фольга або скляний посуд.
Пробу в пробірці ємність т о мл зі звичайного скла майже повністю занурюють в прозрр чний посудину aMapa, наповнений рідким азотом. Про помоввю Тримають ївши ДРД РЗУ закріплюють в певному положенні на Р Уото ванні г 2 ш від передньої стінки судини. Світло від ртутної лШг1И направляють на світлофільтр УФС-2. Світло лампи з допомогу конденсатора фокусується на замороженої пробі.
Пробу в пробірці ємність 10 мл зі звичайного скла почтя повністю занурюють в прозору судину Д'вара, наповнені рідким азотом. З поіощвю власника пробірку закріплюють в певному становище на відстані 1 - 2 мм від передньої стінки судини. Світло від ртутної лампи спрямовує на світлофільтр УФС-2. Світло лампи за допомогою конденсатора фокусується на замороженої пробі.