А   Б  В  Г  Д  Е  Є  Ж  З  І  Ї  Й  К  Л  М  Н  О  П  Р  С  Т  У  Ф  Х  Ц  Ч  Ш  Щ  Ю  Я 


Рідка живильне середовище

Рідка живильне середовище заливається в колби на /4 - Vs їх обсягу і після стерилізації інокуліруется змивом 5 - 7-денної культури з косого агару, де повністю закінчилося спорообразование. Інокулював колби поміщають нагойдалку на 48 годин при температурі 28 - 30 С і 105 оборотах в хвилину.

Рідкі поживні середовища можна стерилізувати фільтруванням через свічки Шамбері-лена, азбестові або скляні фільтри марки Schott G-5. Найбільш поширеним є фільтрування через спеціальнідиски з суміші азбесту і клітковини.

При зростанні на рідких поживних середовищах одні види спороносних бактерій утворюють поверхневу плепку, інші - пет. Культури бактерій, що характеризуються утворенням поверхневої плівки, при втраті спорообразования позбавляютьсяцієї здатності.

При постановці досвіду: основна рідка живильне середовище для накопичувальної культури без джерела вуглецю, склянка з гасом або вазеліновим маслом, грунтовий зразок, колби на 250 і 100 мл, циліндр иа 100 мл, алюмінієва чанная ложка, вата для пробок,піпетки Морівськ на 1 мл.

Пліснява переносяться з щільних і рідких поживних середовищ на свіжі щільні або рідкі середовища бактеріальної петлею. Прожаривши бактеріальну петлю, її охолоджують і, захопивши малу кількість спор цвілевих грибів з зрілої культури,переносять їх на щільну живильне середовище в пробірці, проводячи петлею по її поверхні від нижнього краю середовища до верхнього. У рідку середу занурюють бактеріальну петлю із захопленими нею суперечками і помішують для розподілу висівають матеріалу в рідині. Засіянаживильне середовище піддається інкубації при належній температурі.

Вирощування плівки грибів на рідкому живильному середовищі для отримання амілази незастосовне, так як міститься в середовищі цукор перетворюється на органічні кислоти, які інактивують амілазу.

У короткострокових дослідах на рідкому живильному середовищі Чапека-Докса вивчали Б динаміці вплив фунгіцидів ТФБА, трілана, мертіолату на активність неорганічної пірофосфатази цвілевого грнба AspergUluS niger. При введенні в живильну середу фунгіцидів знижується актив-иость ферменту в міцелії і підвищується в культуральній рідині. Найбільш сильне дію і в короткі терміни надає мертіолату, менш токсичний трілак, слабке вплив робить ТФБА.

Глибинну культуру мікроорганізмів вирощують на рідкому живильному середовищі приенергійної аерації в герметично закритих апаратах та в стерильних умовах. Стерильність глибинної культури мікроорганізма - продуцента ферментів позитивно відбивається на результатах зброджування сусла дріжджами.

Чисту культуру слід підтримувати нарідкому живильному середовищі, причому потрібно робити пересівання не пізніше ніж через 7 - 10 днів 3 - 5 мл інокулята.

Осветлением називається коагуляція осаду в рідких поживних середовищах. Деякі середовища залишаються каламутними і після фільтрування їх необхідно освітлити за допомогоюяєчного білка. До 2 л живильного середовища, охолодженої до 50 С, додають збитий яєчний білок, швидко все перемішують і потім кип'ятять. Після коагуляції білок осідає, висвітлюючи рідину, після чого його видаляють фільтрацією.

Методом послідовних серійних розведеньна щільних і рідких поживних середовищах проведені дослідження антимікробних властивостей ціаніду калію і чутливості до нього 26 видів і різновидів бактерій роду Bacillus. Показано, що склад середовища впливає на антимікробну активність KCN. Виявленімікроорганізми з різною чутливістю до ціаніду калію в інтервалі концентрацій 1 - 100 мг /л, які можуть бути використані в якості біоіндикаторів для визначення K.

При вирощуванні мікроорганізмів в колбах використовують тільки рідкі поживні середовища.

Отриманий таким чином сік вводять в рідку живильне середовище в різних кількостях, щоб отримати ряд розведень. На 100 мл живильного середовища додають 4 0; 2 0; 1 0; 0 5; 025 мл соку, після чого, додаючи воду, доводять об'єм до 4 мл. Контролем служить живильна середа з 4мл соку з контрольних рослин.

Для цього до культури мікобактерій на рідкому живильному середовищі додають 1 мл розчину KCNw. При наявності ніацину через кілька хвилин з'являється яскраво-жовте забарвлення. Для нейтралізації KCN після врахування результатів в пробірки додають3 - 5 мл 10% - го розчину гідрокарбонату натрію. Для визначення ніацину в екстрактах з агарових культур використовують також паперові індикаторні смужки.

Посівний матеріал вирощують поверхневим способом на рідких поживних середовищах. Посівним матеріалом дляферментації може служити жвава на МПБ культура, яка пройшла перевірку на чистоту.

В умовах зануреного зростання культури на рідких поживних середовищах спостерігається неповний життєвий цикл, який закінчується автолізом неспорулірующего міцелію.

Дротяники, уражений грибом Cordyceps. видно тяжі, що виходять з мертвої личинки. Недосконалі гриби вирощують на твердих або рідких поживних середовищах, а також на трупах комах.

Посівний матеріал вирощують поверхневим способом на рідких поживних середовищах.Посівним матеріалом для ферментації може служити жвава на МПБ культура, яка пройшла перевірку на чистоту.

При глибинному культивуванні мікроорганізми розвиваються в усьому обсязі рідкого ПС. Так як переважна більшість продуцентівферментів - суворі аероби, середу інтенсивно аерується. У мікроорганізмах протікають два нерозривно пов'язаних процесу - синтез біомаси і синтез ферментів.

Для приготування мазка з культури бактерій, вирощеної в рідкому живильному середовищі, на серединузнежиреного в полум'ї пальника предметного скла наносять краплю культури петлею або пастерівською піпеткою (потім піпетку занурюють у дезінфікуючий розчин) і рівномірно розподіляють її петлею.

Культивування бактерій, згідно з технологічним процесом,здійснюється на водній, рідкому живильному середовищі з початковим вмістом 0500 - 0600 мг% цукру і - ассіміліруемих азоту і різних елементів: магнію, сірки, натрію, калію та інших, що стерилізуються при 130 С протягом 60 хвилин в установках ферментирование або за допомогоюпостійної системи, коли діють великі ферментери.

Принципова схема такого культивування полягає в вирощуванні водоростей в рідких поживних середовищах в басейнах, лотках та інших ємностях з різними способами перемішування, подачі вуглекислоти івикористанням сонячного світла.

Лутай - біологічний препарат, отриманий із Trichoderma harzianum на рідкому живильному середовищі. Активний початок: конідії гриба, володіє гіперпаразітіческой активністю, пригнічує різні види гнилей, що уражають зернові культури івиноградники, активний проти парші, фітофореза, захищає овочі та фрукти при дозріванні, зберіганні та перевезеннях.

Для довготривалого збереження чистих культур Nitrosomonas Є. Л.Pубан рекомендує зберігати їх на рідкому живильному середовищі № 25 розведеної в 10 разів, робитипересівання великою кількістю посівного матеріалу не рідше ніж через 10 днів, і в великому числі повторностей. При цьому частина культур гине.

У грибів деяких пологів конідії, що потрапили на тіло господаря або в рідку живильне середовище, покриваються товстою оболонкою іутворюють тільця, подібні азігоспорам, зазвичай із залишками папілом, теж з товстою оболонкою.

Збудник туляремії добре розмножується в желточном мішку 12-денного курячого ембріона, в рідких поживних середовищах він росте погано.

Для отримання накопичувальноїкультури вуглеводні родокісляющіх бактерій в колбу ємністю 250 мл наливають 100 мл бульйону (або в колбу ємністю 150 мл - 30 мл середовища) наступного складу (в%): КМОз-04; КН2PО4 - 006; Na2HPO4 - 006; Na2HPO4 - 12H2O - 014; MgSO4 7Н2О - 008; водопровідна вода (рН середовища - 7 2 - 7 3 - встановлюютьпо бромтімолблау.

З посівів готують мазки, фарбують їх по Граму, враховують характер росту на рідких поживних середовищах і пересівають матеріал на щільні середовища. Багато збудники газової гангрени викликають розриви і утворення бульбашок газу в глибиніпоживних середовищ.

Контроль стерильності по МУ 42 - 51 - 24 - 93 рекомендується здійснювати методом занурення в рідкі поживні середовища. Паралельно проводять контроль мікробної контамінації повітря приміщень, де проводився відбір проб.

Пророщування конідій./- Проростаючі конідії. 2-початок розгалуження гіф. 3-глибинна колонія. Глибинна культура цвілевих грибів відрізняється від поверхневої культури тим, що міцелій гриба розвивається в глибині рідкого ПС. Досягається це безперервним розмішуванням рідкого середовища інасиченням її повітрям.

Бродильний метод полягає в посіві певних об'ємів води і вирощуванні при 4305 С в рідкому живильному середовищі накопичення (з поплавками) з наступним висівом бактерій на щільну агарового середовища Ендо, диференціюванні ймовірного числакишкових паличок в 1 л води.

Такі клітинні лінії уподібнюються одноклітинним мікроорганізмам і можуть називатися суспензійний культури в разі їх вирощування в рідких поживних середовищах. Склад і реологічні характеристики середовищ є основнимичинниками, що визначають знаходження одиночних або аггломеріру-ющіхся (агрегує) клітин у зваженому стані. Якщо число клітин в аггломератах перевищує 50 то вони можуть випасти (або випадають) в осад. Бажано, щоб в процесі розмноження клітини довшезалишалися в роз'єднаному стані, тоді підтримання суспензійний культури протягом необхідного часу виявляється цілком досяжним.

Суспензійна культура - тип культури, в якій клітини або їх агрегати розмножуються, будучи суспендованих в рідкійживильному середовищі.

Чисто статистичну помилку, залежну від п1 /2 можна зменшити, якщо в культуру бактерій в рідкому живильному середовищі внести таку кількість суспензії фага, в якому міститься від 104 до 101 його частинок. Лізис бактеріальної культури супроводжуєтьсязменшенням її каламутності, і оцінка лізису проводиться шляхом визначення часу, необхідного для лізису стандартної культури до певної міри. Звичайно, при використанні цього методу абсолютно необхідна точна стандартизація всіх умов, і він користуєтьсяменш широким розповсюдженням, що метод підрахунку стерильних плям.

Для цього готують розведення бульонной культури мікоплазм і по 005 мл засівають в кожну пробірку з рідким живильним середовищем, що містить 1% глюкози і в якості індикатора - фенол-рот. Посівиінкубують при 37 протягом чотирьох-п'яти діб, враховують результати і визначають робочу дозу. Далі переходять до постановкиPІМ. Для цього випробувану сироватку розводять від 1: 8 до 1: 256 на фізрозчин в обсязі 0 5 мл. До кожного розведення сироватки додають по 005 мл інфекту,взятого в робочій дозі.

Технологія приготування бактеріальних препаратів складається з наступних основних етапів: масове накопичення спір шляхом стерильного вирощування в рідких поживних середовищах, відділення суперечка від рідини сепаруванням і, нарешті, змішуваннясуперечка з нейтральним наповнювачем і сушка.

Якщо метою культивування бактерій в лабораторії є синтез і виділення певного білка, то культури вирощують на складних рідких поживних середовищах в колбах.

По 1 мл стандартних розчинів визначаєтьсяречовини (наприклад, вітаміну) поміщають в пробірки з 9 мл бульйону.

Число мікробних тіл в 1 мл культуральної рідини E. coli К-12. Було зроблено припущення, що стерилізуючий ефект електричного струму обумовлений впливом токсичних речовин,утворюються в процесі електролізу рідкого ПС.

У другому випадку з суперечка, зібраних в пробірці з косим агаром, готують водну суспензію і нею засівають рідку живильне середовище, яку направляють в растільний апарат. З-під зрослою спороносящихплівки видаляють рідку середу, плівку підсушують, знімають з кювет, подрібнюють і упаковують. Готовий споровий матеріал не містить домішки середовища і володіє високою схожістю (90 - 95%), яка зберігається понад 3 років.

Для встановлення наявності термофільною мікрофлорив грунті зазвичай використовувався метод посіву грунтової суспензії на тверді шггательние середовища або прийом збагачення рідкого ПС. ЗЕМЕЦЬКИЙ (Ziemiecka, 1934) застосувала оригінальний метод дослідження.

Тверді середовища використовують переважно для збереження водоростей (колекції), а вивчення їх фізіологічних і біохімічних властивостей проводять головним чином на рідких поживних середовищах.

Запірно-регулюючий пристрій в системі трубопроводів для засіву промислового ферментатора (2 з інокулятора (1. 3 - 10 - клапани, 11 - пастки конденсату. АБ - відрізок трубопроводу. Мікроорганізм у вигляді суспензії певної щільності подають з інокулятора (- ів) у промисловий біореактор , або ферментатор, в якому міститься стерильна рідка живильне середовище. При цьому не повинно статися потрапляння яких сторонніх мікробів у поживне середовище разом з продуцентом - всі з'єднання системи повинні бути герметично закритими.

В укладках такого типу для визначення БПЩ використовується метод мембранних фільтрів, який дозволяє істотно скоротити обсяг і вага похідної лабораторії, виключає застосування рідких поживних середовищ, об'ємистих склянок. Чашки Петрі для зменшення ваги укладок можуть бути замінені алюмінієвими баночками.

В укладках такого типу для визначення БГКП використовується метод мембранних фільтрів, який дозволяє істотно скоротити обсяг і вага похідної лабораторії, виключає застосування рідких поживних середовищ, об'ємистих склянок. Чашки Петрі для зменшення ваги укладок можуть бути замінені алюмінієвими баночками.

Токсичність пестицидів для бульбочкових бактерій вивчають традиційними методами, оцінюючи наявність стерильних зон навколо агарових блоків або дисків фільтрувального паперу , змочених розчинами різних концентрацій препаратів, або визначаючи швидкість розмноження бактерій на рідких поживних середовищах, що містять відомі дози пестицидів. Умови проведення дослідів, як правило, далекі від тих, які складаються в грунті на коренях рослин.

Водні розчини ціаніду калію (11020 305070 100 мг на 1 л середовища) вводилися в розплавлений і охолоджений до 45 С поживний агар йшли в рідкі поживні середовища. агару в чашки Петрі, підсушують 30 - 40 хв при 37 - 40 С.

Кількісний облік загального числа мікроорганізмів активного мулу (біоплівки) може здійснюватися кількома методами: методом безпосереднього підрахунку мікробів під мікроскопом (так званий метод прямого рахунку) і методом рахунки мікробів шляхом культивування на твердих або рідких поживних середовищах.